{"id":57091,"date":"2016-02-07T22:50:33","date_gmt":"2016-02-08T01:50:33","guid":{"rendered":"http:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/?p=57091"},"modified":"2016-02-07T22:50:33","modified_gmt":"2016-02-08T01:50:33","slug":"analisis-fisico-quimico-y-bacteriologico-de-aguas","status":"publish","type":"post","link":"https:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/analisis-fisico-quimico-y-bacteriologico-de-aguas\/","title":{"rendered":"An\u00e1lisis f\u00edsico &#8211; qu\u00edmico y bacteriol\u00f3gico de aguas"},"content":{"rendered":"<p><a href=\"http:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/derrame-agua.jpg\" rel=\"attachment wp-att-57099\"><img loading=\"lazy\" decoding=\"async\" class=\"alignnone size-medium wp-image-57099\" src=\"http:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/derrame-agua-300x199.jpg\" alt=\"derrame-agua\" width=\"300\" height=\"199\" srcset=\"https:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/derrame-agua-300x199.jpg 300w, https:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/derrame-agua-451x300.jpg 451w, https:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/derrame-agua.jpg 620w\" sizes=\"auto, (max-width: 300px) 100vw, 300px\" \/><\/a>Agua Potable:<\/p>\n<p>Significa que debe estar libre de microorganismos pat\u00f3genos, de minerales y sustancias org\u00e1nicas que puedan producir efectos fisiol\u00f3gicos adversos. Debe ser est\u00e9ticamente aceptable y, por lo tanto, debe estar exenta de turbidez, color, olor y sabor desagradable. Puede ser ingerida o utilizada en el procesamiento de alimentos en cualquier cantidad, sin temor por efectos adversos sobre la salud (Borchardt and Walton, 1971).<\/p>\n<p>Seg\u00fan el Art. 982 CAA (modificado por Resoluc. 494\/94). Con las denominaciones de Agua potable de suministro p\u00fablico y agua potable de uso domiciliario, se entiende la que es apta para la alimentaci\u00f3n y uso dom\u00e9stico: no deber\u00e1 contener sustancias o cuerpos extra\u00f1os de origen biol\u00f3gico, org\u00e1nico, inorg\u00e1nico o radiactivo en tenores tales que la hagan peligrosa para la salud.<\/p>\n<p>Deber\u00e1 presentar sabor agradable y ser pr\u00e1cticamente incolora, inodora, l\u00edmpida y transparente.<\/p>\n<p>El agua potable de uso domiciliario es el agua proveniente de un suministro p\u00fablico, de un pozo o de otra fuente, ubicada en los reservorios o dep\u00f3sitos domiciliarios. Ambas deber\u00e1n cumplir con las caracter\u00edsticas f\u00edsicas, qu\u00edmicas y microbiol\u00f3gicas que cita el Art. 982 CAA.<\/p>\n<p>An\u00e1lisis f\u00edsico &#8211; qu\u00edmico<\/p>\n<ul>\n<li>Volumen de agua a extraer:<\/li>\n<\/ul>\n<p>No es posible fijar de una manera general el volumen de agua a extraer para el an\u00e1lisis qu\u00edmico, pues variara seg\u00fan las determinaciones a efectuar entre 1 a 5 litros.<\/p>\n<p>Examen f\u00edsico<\/p>\n<ul>\n<li>Color:<\/li>\n<\/ul>\n<p>El color de las aguas naturales se debe a la presencia de sustancias org\u00e1nicas disueltas o coloidales, de origen vegetal y, a veces, sustancias minerales (sales de hierro, manganeso, etc.). Como el color se aprecia sobre agua filtrada, el dato anal\u00edtico no corresponde a la coloraci\u00f3n comunicada por cierta materia en suspensi\u00f3n.<\/p>\n<p>El color de las aguas se determina por comparaci\u00f3n con una escala de patrones preparada con una soluci\u00f3n de cloruro de platino y cloruro de cobalto. El n\u00famero que expresa el color de un agua es igual al n\u00famero de miligramos de platino que contiene un litro patr\u00f3n cuyo color es igual al del agua examinada.<\/p>\n<p>Se acepta como m\u00ednimo 0,2 y como m\u00e1ximo 12 mg de platino por litro de agua.<\/p>\n<ul>\n<li>Olor:<\/li>\n<\/ul>\n<p>Est\u00e1 dado por diversas causas. Sin embargo los casos m\u00e1s frecuentes son:<\/p>\n<ul>\n<li>debido al desarrollo de microorganismos,<\/li>\n<li>a la descomposici\u00f3n de restos vegetales,<\/li>\n<li>olor debido a contaminaci\u00f3n con l\u00edquidos cloacales industriales,<\/li>\n<li>olor debido a la formaci\u00f3n de compuestos resultantes del tratamiento qu\u00edmico del agua.<\/li>\n<\/ul>\n<p>Las aguas destinadas a la bebida no deben tener olor perceptible.<\/p>\n<p>Se entiende por valor umbral de olor a la diluci\u00f3n m\u00e1xima que es necesario efectuar con agua libre de olor para que el olor del agua original sea apenas perceptible.<\/p>\n<p>Se aceptan como valores m\u00e1ximos para un agua optima 2 a 10 unidades.<\/p>\n<ul>\n<li>Sabor:<\/li>\n<\/ul>\n<p>Est\u00e1 dado por sales disueltas en ella. Los sulfatos de hierro y manganeso dan sabor amargo. En las calificaciones de un agua desempe\u00f1a un papel importante, pudiendo ser agradable u objetable.<\/p>\n<ul>\n<li>Determinaci\u00f3n de pH:<\/li>\n<\/ul>\n<p>El pH \u00f3ptimo de las aguas debe estar entre 6,5 y 8,5, es decir, entre neutra y ligeramente alcalina, el m\u00e1ximo aceptado es 9. Las aguas de pH menor de 6,5, son corrosivas, por el anh\u00eddrido carb\u00f3nico, \u00e1cidos o sales \u00e1cidas que tienen en disoluci\u00f3n. Para determinarlo usamos m\u00e9todos colorim\u00e9tricos o potenciom\u00e9tricos.<\/p>\n<p>Para poder decidir sobre la potabilidad del agua se requiere el control de un n\u00famero elevado de par\u00e1metros qu\u00edmicos y determinados par\u00e1metros bacteriol\u00f3gicos. Dentro de los primeros cobra especial importancia el amonio, los nitratos y nitritos, indicadores de contaminaci\u00f3n por excelencia.<\/p>\n<ul>\n<li>Amonio :<\/li>\n<\/ul>\n<p>Este ion tiene escasa acci\u00f3n t\u00f3xica por s\u00ed mismo, pero su existencia a\u00fan en bajas concentraciones, puede significar contenido aumentado de bacterias fecales, pat\u00f3genos etc., en el agua. La formaci\u00f3n del amonio se debe a la descomposici\u00f3n bacteriana de urea y prote\u00ednas, siendo la primera etapa inorg\u00e1nica del proceso.<\/p>\n<ul>\n<li>Nitritos:<\/li>\n<\/ul>\n<p>Estos representan la forma intermedia, metaestable y t\u00f3xica del nitr\u00f3geno inorg\u00e1nico en el agua. Dada la secuencia de oxidaci\u00f3n bacteriana: prote\u00ednas -\u00e0 amonio -\u00e0 nitritos&#8211;\u00e0 nitratos, los nitritos se convierten en importante indicador de contaminaci\u00f3n, advirtiendo sobre una nitrificaci\u00f3n incompleta.<\/p>\n<ul>\n<li>Nitratos:<\/li>\n<\/ul>\n<p>La existencia de \u00e9stos en aguas superficiales no contaminadas y sin aporte de aguas industriales y comunales , se debe a la descomposici\u00f3n de materia org\u00e1nica (tanto vegetal como animal) y al aporte de agua de lluvia ( 0,4 y 8 ppm ).<\/p>\n<ul>\n<li>Cloruros:<\/li>\n<\/ul>\n<p>Todas las aguas contienen cloruros. Una gran cantidad puede ser \u00edndice de contaminaci\u00f3n ya que las materias residuales de origen animal siempre tienen considerables cantidades de estas sales. Un agua con alto tenor de oxidabilidad, amon\u00edaco, nitrato, nitrito, caracteriza una contaminaci\u00f3n y por lo tanto los cloruros tienen ese origen. Pero si estas sustancias faltan ese alto tenor se debe a que el agua atraviesa terrenos ricos en cloruros. Los cloruros son inocuos de por s\u00ed, pero en cantidades altas dan sabor desagradable.<\/p>\n<p>Valor m\u00e1ximo aceptable: 350 mg\/l.<\/p>\n<p>M\u00e9todo de Mohr<\/p>\n<ul>\n<li>Generalidades:<\/li>\n<\/ul>\n<p>Si se agregan iones de plata a una soluci\u00f3n de pH entre 7 y 9 que contenga cloruros y cromato, la precipitaci\u00f3n del cloruro de plata est\u00e1 pr\u00e1cticamente terminada cuando se comienza a precipitar el cromato de plata. Este hecho permite considerar la aparici\u00f3n de un precipitado rojo de cromato de plata, como indicador del punto final.<\/p>\n<ul>\n<li>Reactivos:<\/li>\n<\/ul>\n<p>Soluci\u00f3n 0,00282 N de nitrato de plata<\/p>\n<p>Cromato de potasio 5 %<\/p>\n<ul>\n<li>T\u00e9cnica:<\/li>\n<\/ul>\n<p>Se filtra el agua si contiene materias en suspensi\u00f3n. Se toman 100 ml de la muestra (si el pH es inferior a 7 se a\u00f1ade 1 gramo de bicarbonato), se agrega 1 ml de cromato de potasio y se valora a\u00f1adiendo gota a gota la soluci\u00f3n de nitrato de plata hasta coloraci\u00f3n apenas rojiza. Se resta 0,2 al n\u00famero de ml empleados ( gasto correspondiente al ensayo en blanco).<\/p>\n<ul>\n<li>C\u00e1lculo:<\/li>\n<\/ul>\n<p>n= es el n\u00famero de ml de la soluci\u00f3n de nitrato de plata usada en la valoraci\u00f3n<\/p>\n<p>V= volumen de muestra original<\/p>\n<ul>\n<li>Determinaci\u00f3n de Cloro Libre en aguas:<\/li>\n<\/ul>\n<p>La ortotoluidina en medio clorh\u00eddrico y en presencia de cloro libre se oxida, dando un compuesto de coloraci\u00f3n amarilla. Como la intensidad de la coloraci\u00f3n aumenta por concentraciones crecientes de cloro libre se puede determinar por colorimetr\u00eda, utilizando una serie de patrones de concentraci\u00f3n conocida.<\/p>\n<ul>\n<li>Reactivo:<\/li>\n<\/ul>\n<p>Soluci\u00f3n de ortotoluidina.<\/p>\n<ul>\n<li>T\u00e9cnica:<\/li>\n<\/ul>\n<p>Se utilizan tubos de ensayo donde se enfrentan 10 ml de agua y 0,2 ml de reactivo se deja en reposo 5 o 10 minutos, en oscuridad. Se compara la coloraci\u00f3n obtenida con los patrones permanentes.<\/p>\n<p>Valor m\u00ednimo aceptable de cloro activo residual: 0,2 mg\/l.<\/p>\n<p><a href=\"http:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/image004.jpg\" rel=\"attachment wp-att-57096\"><img loading=\"lazy\" decoding=\"async\" class=\"alignnone size-medium wp-image-57096\" src=\"http:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/image004-300x225.jpg\" alt=\"image004\" width=\"300\" height=\"225\" srcset=\"https:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/image004-300x225.jpg 300w, https:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/image004-400x300.jpg 400w, https:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/image004.jpg 640w\" sizes=\"auto, (max-width: 300px) 100vw, 300px\" \/><\/a> <a href=\"http:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/image003.jpg\" rel=\"attachment wp-att-57097\"><img loading=\"lazy\" decoding=\"async\" class=\"alignnone size-medium wp-image-57097\" src=\"http:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/image003-300x225.jpg\" alt=\"image003\" width=\"300\" height=\"225\" srcset=\"https:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/image003-300x225.jpg 300w, https:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/image003-400x300.jpg 400w, https:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/image003.jpg 640w\" sizes=\"auto, (max-width: 300px) 100vw, 300px\" \/><\/a><\/p>\n<ul>\n<li>Residuos por evaporaci\u00f3n (S\u00f3lidos Disueltos)<\/li>\n<\/ul>\n<p>Se denomina as\u00ed al peso de las sustancias disueltas en 1 litro de agua, no vol\u00e1tiles a 105 \u00baC. Se consideran disueltas aquellas que no son retenidas por filtraci\u00f3n.<\/p>\n<ul>\n<li>T\u00e9cnica:<\/li>\n<\/ul>\n<p>Se tara una c\u00e1psula de porcelana que se coloca sobre Ba\u00f1o Mar\u00eda, se miden 100 ml de agua y se vierte sobre la c\u00e1psula hasta evaporaci\u00f3n. Se coloca luego en estufa a 105 \u00baC y se deja durante 2 horas. Se retira, se deja enfriar en desecador sulf\u00farico y se pesa. El aumento de peso es el residuo por evaporaci\u00f3n correspondiente al volumen de agua tomado. Los resultados se expresan en mg\/l.<\/p>\n<p>Valor m\u00e1ximo aceptable: 1.500 mg\/l.<\/p>\n<ul>\n<li>Dureza:<\/li>\n<\/ul>\n<p>Se habla de aguas duras o blandas para determinar calidad de las mismas. Las primeras tienen alto tenor de sales de calcio y magnesio disueltas. Las blandas son pobres en estas sales.<\/p>\n<ul>\n<li>Bicarbonato de calcio y magnesio: Dureza Temporal<\/li>\n<li>Sulfato y cloruro de calcio y magnesio: Dureza Permanente<\/li>\n<\/ul>\n<p>Puede haber tambi\u00e9n nitratos, fosfatos, silicatos, etc. (dureza permanente). El agua debe tener una dureza comprendida entre 60 y 100 mg\/l. no siendo conveniente aguas de dureza inferiores a 40 mg\/l, por su acci\u00f3n corrosiva.<\/p>\n<p>valor m\u00e1ximo aceptable de Dureza Total (CaCO<sub>3<\/sub>) 400 mg\/l.<\/p>\n<p>Alcalinidad:<\/p>\n<p>Esta representada por sus contenidos en carbonatos y bicarbonatos. Eventualmente se puede deber a hidr\u00f3xidos, boratos, silicatos, fosfatos. Las soluciones acuosas de boratos tienen un pH 8,3 y las de \u00e1cido carb\u00f3nico 4,3. Por estas razones se toman estos pH como puntos finales. Como indicadores de estos puntos se utilizan fenolftaleina (pH 8,3) y heliantina (pH 4,2).<\/p>\n<ul>\n<li>Reactivos:<\/li>\n<\/ul>\n<p>\u00c1cido sulf\u00farico 0,02 N<\/p>\n<p>Fenolftaleina 0,5 %<\/p>\n<p>Heliantina 0,05 %<\/p>\n<ul>\n<li>T\u00e9cnica:<\/li>\n<\/ul>\n<p>Se a\u00f1ade 0,2 ml de fenolftaleina a 100 ml de agua. Coloraci\u00f3n rosada indica presencia de carbonato, en este caso se agrega gota a gota soluci\u00f3n de \u00e1cido sulf\u00farico 0,02 N hasta desaparici\u00f3n de color. Se designa como F la cantidad de ml gastados. A la misma muestra se le agregan 2 gotas de heliantina y se a\u00f1ade gota a gota \u00e1cido sulf\u00farico 0,02 N hasta color salm\u00f3n. Se designa por H la cantidad de ml usados en esta ultima determinaci\u00f3n.<\/p>\n<ul>\n<li>Expresi\u00f3n de resultados:<\/li>\n<li>Alcalinidad de carbonatos en mg\/l= 2 x F x 10<\/li>\n<li>Alcalinidad de bicarbonatos en mg\/l= (H &#8211; F) x 10<\/li>\n<li><\/li>\n<li><\/li>\n<li>An\u00e1lisis Bacteriol\u00f3gico de aguas<\/li>\n<\/ul>\n<p>Generalidades:<\/p>\n<p>Existe un grupo de enfermedades conocidas como enfermedades h\u00eddricas, pues su v\u00eda de transmisi\u00f3n se debe a la ingesti\u00f3n de agua contaminada. Es entonces conveniente determinar la potabilidad desde el punto de vista bacteriol\u00f3gico.<\/p>\n<p>Buscar g\u00e9rmenes como <em>Salmonella<\/em>, <em>Shigella<\/em>, trae inconvenientes, pues normalmente aparecen en escasa cantidad. Por otra parte su supervivencia en este medio desfavorable y la carencia de m\u00e9todos sencillos y r\u00e1pidos, llevan a que su investigaci\u00f3n no sea satisfactoria, m\u00e1xime cuando se hallen en n\u00famero reducido.<\/p>\n<p>En vista de estos inconvenientes se ha buscado un m\u00e9todo mas seguro para establecer la calidad higi\u00e9nica de las aguas, m\u00e9todo que se basa en la investigaci\u00f3n de bacterias coliformes como indicadores de contaminaci\u00f3n fecal.<\/p>\n<p>El agua que contenga bacterias de ese grupo se considera potencialmente peligrosa, pues en cualquier momento puede llegar a vehiculizar bacterias pat\u00f3genas, provenientes de portadores sanos, individuos enfermos o animales.<\/p>\n<p>Principales enfermedades de origen h\u00eddrico y sus agentes responsables<\/p>\n<table width=\"576\">\n<tbody>\n<tr>\n<td width=\"278\">Enfermedad<\/td>\n<td width=\"278\">Agente<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td colspan=\"2\" width=\"566\">Origen bacteriano<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"278\">Fiebres tifoideas y paratifoideas<\/td>\n<td width=\"278\"><em>Salmonella typhi<\/em><\/p>\n<p><em>Salmonella<\/em><\/p>\n<p><em>Paratyphi A y B<\/em><\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"278\"><\/td>\n<td width=\"278\"><\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"278\">Disenter\u00eda bacilar<\/td>\n<td width=\"278\"><em>Shigella<\/em><\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"278\"><\/td>\n<td width=\"278\"><\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"278\">C\u00f3lera<\/td>\n<td width=\"278\"><em>Vibrio cholerae<\/em><\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"278\"><\/td>\n<td width=\"278\"><\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"278\">Gastroenteritis agudas y diarreas<\/td>\n<td width=\"278\"><em>Escherichia coli<\/em> ET<\/p>\n<p><em>Campylobacter jejuni<\/em><\/p>\n<p><em>Campylobacter coli<\/em><\/p>\n<p><em>Yersinia<\/em> enterocolitica<\/p>\n<p><em>Salmonella<\/em> sp<\/p>\n<p><em>Shigella<\/em> sp<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"278\"><\/td>\n<td width=\"278\"><\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td colspan=\"2\" width=\"566\">Origen viral<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"278\">Hepatitis A y E<\/td>\n<td width=\"278\">Virus de la hepatitis A y E<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"278\"><\/td>\n<td width=\"278\"><\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"278\">Poliomielitis<\/td>\n<td width=\"278\">Virus de la polio<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"278\"><\/td>\n<td width=\"278\"><\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"278\">Gastroenteritis agudas y diarreas<\/td>\n<td width=\"278\">Virus Nortwalk<\/p>\n<p>Rotavirus<\/p>\n<p>Astrovirus<\/p>\n<p>Calicivirus<\/p>\n<p>Enterovirus<\/p>\n<p>Adenovirus<\/p>\n<p>Reovirus<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td colspan=\"2\" width=\"566\"><\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td colspan=\"2\" width=\"566\">Origen parasitario<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"278\">Disenter\u00eda amebiana<\/td>\n<td width=\"278\"><em>Entamoeba histolytica<\/em><\/p>\n<p><em>Giardia lambia<\/em><\/p>\n<p><em>Cristosporidium<\/em><\/td>\n<\/tr>\n<\/tbody>\n<\/table>\n<ul>\n<li>Toma de muestra:<\/li>\n<\/ul>\n<p>La muestra para an\u00e1lisis bacteriol\u00f3gico debe efectuarse con el mayor cuidado<\/p>\n<ul>\n<li>Envase:<\/li>\n<\/ul>\n<p>Se deben utilizar frascos esterilizados y con envoltura externa. La capacidad debe ser de 200 a 250 cc.<\/p>\n<ul>\n<li>Env\u00edo de muestras:<\/li>\n<\/ul>\n<p>Debe transcurrir el menor tiempo entre la extracci\u00f3n y la llegada al laboratorio, y que durante ese tiempo se mantenga entre 4 y 10 \u00baC. De lo contrario se producen modificaciones cuali &#8211; cuantitativas de la flora bacteriana.<\/p>\n<ul>\n<li>Toma de muestra de un grifo en una ca\u00f1er\u00eda de agua corriente:<\/li>\n<\/ul>\n<ol>\n<li>Se elige un grifo que este conectado directamente con una ca\u00f1er\u00eda de distribuci\u00f3n, es decir, que el ramal del grifo no este comunicado con tanques domiciliarios, filtros, ablandadores u otros artefactos similares. Tampoco conviene extraer muestras de grifos colocados en puntos muertos de la ca\u00f1er\u00eda.<\/li>\n<li>Estas precauciones no se tienen en cuenta cuando se desea conocer la calidad del agua que suministra un determinado grifo, en lugar de la que conduce la ca\u00f1er\u00eda principal.<\/li>\n<li>Se quitan del grifo los dispositivos destinados a evitar salpicado. Luego se limpia la boca del grifo, cuidando de eliminar la suciedad que a veces se acumula en la parte interna del orificio. Despu\u00e9s se deja salir agua en forma abundante durante 2 o 3 minutos y se cierra perfectamente el grifo para esterilizarlo.<\/li>\n<li>Se esteriliza el grifo calent\u00e1ndolo durante un par de minutos con un hisopo embebido en alcohol.<\/li>\n<li>Se abre con cuidado y se deja salir agua durante medio minuto en forma tal que el chorro no sea intenso y se llene el envase.<\/li>\n<\/ol>\n<p>An\u00e1lisis bacteriol\u00f3gico<\/p>\n<p>Caracter\u00edsticas microbiol\u00f3gicas seg\u00fan Art. 982 del C.A.A. (modificado por resoluci\u00f3n 494\/94)<\/p>\n<p>Limites permisibles para aguas de consumo<\/p>\n<ol>\n<li>Bacterias mes\u00f3filas viables: en agar Plate Count 24 hs. a 37\u00baC, no mas de 500 UFC\/ml<\/li>\n<li>Bacterias coliformes: NMP a 37\u00baC \u2013 48 hs. (Caldo Mc Conckey o Lauril Sulfato), en 100 ml; igual o menor a 3.<\/li>\n<li>Ausencia de <em>Escherichia coli<\/em>: en 100 ml<\/li>\n<li>Ausencia de <em>Pseudomona aeruginosa<\/em>: por 100 ml de muestra<\/li>\n<\/ol>\n<p>&nbsp;<\/p>\n<p>Determinaci\u00f3n del n\u00famero de bacterias aerobias mes\u00f3filas por el M\u00e9todo de recuento en placa<\/p>\n<ul>\n<li>Generalidades:<\/li>\n<\/ul>\n<p>El agua contiene bacterias cuyas necesidades nutritivas y de temperatura \u00f3ptima de desarrollo son variables.<\/p>\n<p>Ordinariamente esta determinaci\u00f3n se efect\u00faa sembrando en medio s\u00f3lido un volumen conocido de la muestra de agua. Se incuba durante un tiempo y a determinadas temperaturas y se cuenta el n\u00famero de colonias que se obtienen.<\/p>\n<p>El medio utilizado es agar nutritivo o agar Plate Count (aproximadamente 15 ml por placa).<\/p>\n<ul>\n<li>Diluyentes:<\/li>\n<\/ul>\n<p>Es importante usar un l\u00edquido de diluci\u00f3n desprovisto de acci\u00f3n bactericida. En la mayor\u00eda de los casos puede utilizarse agua corriente, agua destilada o soluci\u00f3n fisiol\u00f3gica o agua peptonada 0,1 % con pH ajustado a 7.<\/p>\n<ul>\n<li>Preparaci\u00f3n de las diluciones:<\/li>\n<\/ul>\n<p>Se preparan tubos est\u00e9riles con 9 ml de diluyente. Para hacer las diluciones se agita, repetidas veces, la muestra. Luego se flamea la boca del frasco, se destapa, se vuelca un poco de contenido y, tapado nuevamente, se agita 10 &#8211; 15 veces para asegurar la distribuci\u00f3n uniforme de las bacterias del l\u00edquido.<\/p>\n<p>Luego mediante una pipeta esterilizada, se toma 1 ml de muestra que se pasa a un tubo con 9 ml de diluyente. Se tiene as\u00ed la muestra diluida 10 veces. Se agita esta aspirando y expeliendo el liquido de la pipeta repetidas veces, y luego, mediante otra pipeta esterilizada, se toma 1 ml del liquido diluido, el cual se pasa a un nuevo tubo con soluci\u00f3n diluyente, esta operaci\u00f3n se repite hasta que se estime conveniente. Seg\u00fan la naturaleza del agua se sembrar\u00e1 directamente o diluida. Las muestras de aguas superficiales purificadas o profundas se sembraran directamente y diluidas 1\/10, para las aguas superficiales no purificadas se emplearan diluciones 1\/10, 1\/100, 1\/1000.<\/p>\n<ul>\n<li>Incubaci\u00f3n:<\/li>\n<\/ul>\n<p>Luego se incuban las muestras a 32 &#8211; 35 \u00baC durante 24 horas. Se realiza la siembra en profundidad.<\/p>\n<p>Recuento de colonias en placas:<\/p>\n<ul>\n<li>Seleccionar dos placas correspondientes a una diluci\u00f3n que contenga entre 30 y 300 colonias.<\/li>\n<li>Tomar la media aritm\u00e9tica de los 2 recuentos y multiplicar por el factor de diluci\u00f3n (rec\u00edproco de la diluci\u00f3n utilizada). Informar seg\u00fan el caso, el resultado como n\u00famero de microorganismos aerobios mes\u00f3filos por ml \u00f3 gramo .<\/li>\n<\/ul>\n<p>Ejemplo: diluci\u00f3n 1\/100.<\/p>\n<p>Placa 1: 72 colonias x 100 = 7200<\/p>\n<p>Placa 2: 77 colonias x 100 = 7700<\/p>\n<p>Se promedia = <u>(7200 + 7700)<\/u> = 7450<\/p>\n<p>2<\/p>\n<p>Se informa: 7.450 UFC\/ ml<\/p>\n<p>En la evaluaci\u00f3n de la potabilidad del agua ubicada en reservorios de almacenamiento domiciliario deber\u00e1 incluirse entre los par\u00e1metros microbiol\u00f3gicos a controlar el recuento de bacterias mes\u00f3filas en agar (APC \u2013 24 hs. a 37\u00ba C); en el caso de que el recuento supere las 500 UFC\/ml y se cumplan el resto de los par\u00e1metros indicados, s\u00f3lo se deber\u00e1 exigir la higienizaci\u00f3n del reservorio y un nuevo recuento.<\/p>\n<ol start=\"2\">\n<li>Determinaci\u00f3n del N\u00famero M\u00e1s Probable(NMP) \/ 100 ml de bacterias de coliformes totales (M\u00e9todo de Wilson)<\/li>\n<\/ol>\n<p>Bacterias coliformes:<\/p>\n<p>Son bacterias aerobias o anaerobias facultativas, Gram negativas, no esporuladas, que fermentan la lactosa con producci\u00f3n de \u00e1cido y gas.<\/p>\n<ol>\n<li>A) Ensayo presuntivo:<\/li>\n<\/ol>\n<ul>\n<li>Siembra:<\/li>\n<\/ul>\n<p>Se puede hacer por triplicado en tubos que tengan caldo Mc Conckey o Lactosa bilis verde brillante (LBVB), con la Campana de Durham.<\/p>\n<p>De la muestra de agua se sembrar\u00e1n:<\/p>\n<ul>\n<li>3 tubos de caldo Mc Conckey o LBVB 2% doble concentraci\u00f3n: 10 ml<\/li>\n<li>3 tubos de caldo Mc Conckey o LBVB simple concentraci\u00f3n: 1 ml<\/li>\n<li>3 tubos de caldo Mc Conckey o LBVB simple concentraci\u00f3n: 0,1 ml<\/li>\n<\/ul>\n<p>Incubar los tubos a 32 &#8211; 35 \u00baC durante 48 horas.<\/p>\n<p>Determinar con los tubos positivos (\u00e1cido y gas) el NMP utilizando la tabla de Hoskins. La formaci\u00f3n de gas a las 48 horas se considera evidencia suficiente de la presencia de coliformes.<\/p>\n<p><a href=\"http:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/image005.jpg\" rel=\"attachment wp-att-57095\"><img loading=\"lazy\" decoding=\"async\" class=\"alignnone size-medium wp-image-57095\" src=\"http:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/image005-225x300.jpg\" alt=\"image005\" width=\"225\" height=\"300\" srcset=\"https:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/image005-225x300.jpg 225w, https:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/image005.jpg 480w\" sizes=\"auto, (max-width: 225px) 100vw, 225px\" \/><\/a><\/p>\n<ol>\n<li>B) Ensayo confirmativo: Diferenciaci\u00f3n de bacterias coliformes.<\/li>\n<li>Pasadas las 48 horas, de los tubos positivos de la prueba presuntiva se siembran con ansa, en tubos con caldo Mc Conckey o LBVB de simple concentraci\u00f3n, y en tubos con caldo Triptonado (para realizar la prueba del Indol), que se incuban durante 48 horas en un ba\u00f1o de agua regulado a 44,5 \u00baC \u00b1 0,5 \u00baC Test de Eikman). Sembrar a su vez en tubos con medio Citrato de Koser o Simmons que se incuban a 32 \u00baC durante 48 horas. Esta \u00faltima siembra se realiza mediante el alambre recto, con el objeto de no llevar a los tubos con citrato el material nutritivo del cultivo original. Se consideran positivos los tubos que dieron turbiedad en Citrato Koser o cambio de color en Citrato de Simmons, lo que es originado por el desarrollo de bacterias I.A.C.. En casos dudosos se puede dilucidar agregando gotas del indicador Azul de Bromotimol al medio Citrato de Koser, que carece del mismo. El l\u00edquido permanece verde claro si no ha habido desarrollo, virando al azulado si el citrato ha sido utilizando por las bacterias. Simult\u00e1neamente con el desarrollo se produce cambio de pH.<\/li>\n<li>Confirmar con los tubos de caldo Mc Conckey o LBVB seleccionados que son positivos de organismos coliformes, sembrando por estr\u00edas una ansada de ellos en agar Endo o Eosina azul de metileno (EMB). Incubar las placas invertidas a 32 &#8211; 35 \u00baC examinarlas a las 24 &#8211; 48 horas. Observar en estos medios s\u00f3lidos de confirmaci\u00f3n si existen colonias t\u00edpicas de coliformes. La formaci\u00f3n en el agar EMB de colonias negras o con el centro negro, con la periferia transparente incolora o la formaci\u00f3n en el agar Endo de colonias rojas rodeadas de un halo rojo, confirma la presencia de coliformes.<\/li>\n<\/ol>\n<p>Tabla de Hoskins<\/p>\n<p>N\u00famero de tubos positivos del total de:<\/p>\n<table width=\"557\">\n<tbody>\n<tr>\n<td width=\"118\">3 tubos de 10 ml<\/td>\n<td width=\"119\">3 tubos de 1 ml<\/td>\n<td width=\"119\">3 tubos 0,1 ml<\/td>\n<td width=\"160\">\u00cdndice del NMP\/100 ml<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"118\">0<\/td>\n<td width=\"119\">0<\/td>\n<td width=\"119\">1<\/td>\n<td width=\"160\">3<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"118\">0<\/td>\n<td width=\"119\">1<\/td>\n<td width=\"119\">0<\/td>\n<td width=\"160\">3<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"118\">1<\/td>\n<td width=\"119\">0<\/td>\n<td width=\"119\">0<\/td>\n<td width=\"160\">4<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"118\">1<\/td>\n<td width=\"119\">0<\/td>\n<td width=\"119\">1<\/td>\n<td width=\"160\">7<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"118\">1<\/td>\n<td width=\"119\">1<\/td>\n<td width=\"119\">0<\/td>\n<td width=\"160\">7<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"118\">1<\/td>\n<td width=\"119\">1<\/td>\n<td width=\"119\">1<\/td>\n<td width=\"160\">11<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"118\">1<\/td>\n<td width=\"119\">2<\/td>\n<td width=\"119\">0<\/td>\n<td width=\"160\">11<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"118\">2<\/td>\n<td width=\"119\">0<\/td>\n<td width=\"119\">0<\/td>\n<td width=\"160\">9<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"118\">2<\/td>\n<td width=\"119\">0<\/td>\n<td width=\"119\">1<\/td>\n<td width=\"160\">14<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"118\">2<\/td>\n<td width=\"119\">1<\/td>\n<td width=\"119\">0<\/td>\n<td width=\"160\">15<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"118\">2<\/td>\n<td width=\"119\">1<\/td>\n<td width=\"119\">1<\/td>\n<td width=\"160\">20<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"118\">2<\/td>\n<td width=\"119\">2<\/td>\n<td width=\"119\">0<\/td>\n<td width=\"160\">21<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"118\">2<\/td>\n<td width=\"119\">2<\/td>\n<td width=\"119\">1<\/td>\n<td width=\"160\">28<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"118\">3<\/td>\n<td width=\"119\">0<\/td>\n<td width=\"119\">0<\/td>\n<td width=\"160\">23<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"118\">3<\/td>\n<td width=\"119\">0<\/td>\n<td width=\"119\">1<\/td>\n<td width=\"160\">39<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"118\">3<\/td>\n<td width=\"119\">0<\/td>\n<td width=\"119\">2<\/td>\n<td width=\"160\">64<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"118\">3<\/td>\n<td width=\"119\">1<\/td>\n<td width=\"119\">0<\/td>\n<td width=\"160\">43<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"118\">3<\/td>\n<td width=\"119\">1<\/td>\n<td width=\"119\">1<\/td>\n<td width=\"160\">75<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"118\">3<\/td>\n<td width=\"119\">1<\/td>\n<td width=\"119\">2<\/td>\n<td width=\"160\">120<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"118\">3<\/td>\n<td width=\"119\">2<\/td>\n<td width=\"119\">0<\/td>\n<td width=\"160\">93<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"118\">3<\/td>\n<td width=\"119\">2<\/td>\n<td width=\"119\">1<\/td>\n<td width=\"160\">150<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"118\">3<\/td>\n<td width=\"119\">2<\/td>\n<td width=\"119\">2<\/td>\n<td width=\"160\">210<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"118\">3<\/td>\n<td width=\"119\">3<\/td>\n<td width=\"119\">0<\/td>\n<td width=\"160\">240<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"118\">3<\/td>\n<td width=\"119\">3<\/td>\n<td width=\"119\">1<\/td>\n<td width=\"160\">460<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"118\">3<\/td>\n<td width=\"119\">3<\/td>\n<td width=\"119\">2<\/td>\n<td width=\"160\">1100<\/td>\n<\/tr>\n<\/tbody>\n<\/table>\n<ol>\n<li>C) Prueba de identificaci\u00f3n de organismos coliformes mediante los ensayos del IMVIC (indol, rojo de metilo, Voges Proscauer, citrato).<\/li>\n<li>Investigaci\u00f3n de <em>Escherichia coli<\/em><\/li>\n<li>Escoger tubos gas positivos del caldo Mc Conkey o Lactosa bilis verde brillante (Brila) procedentes del recuento de bacterias coliformes (NMP\/100ml).<\/li>\n<li>Inocular una ansada de caldo de los cultivos seleccionados positivos en tubos de:<\/li>\n<li>Caldo Mc Conkey o Brila.<\/li>\n<li>Una ansada a caldo de peptona.<\/li>\n<li>Incubar los tubos de caldo Mc Conckey o Brila a 44,5 \u00baC \u00b1 0,5 \u00baC y ver si son positivos de formaci\u00f3n de gas a las 24 hs. y a las 48 hs.<\/li>\n<li>Los tubos de caldo Mc Conckey o Brila que presenten gas son positivos tambi\u00e9n de organismos coliformes fecales ya que a esta temperatura solo el bacilo coli fecal produce \u00e1cido y gas.<\/li>\n<li>Despu\u00e9s de 24 hs. de incubaci\u00f3n de los tubos de agua de peptona a\u00f1adir 0,2 \u2013 0,3 ml del reactivo del Indol. Agitar los tubos y dejarlos en reposo 10 minutos. La prueba positiva de producci\u00f3n de Indol se manifiesta por una coloraci\u00f3n rojo oscura, en la prueba negativa se conserva el color original del reactivo.<\/li>\n<\/ol>\n<p>Los cultivos gas positivos en Mc Conckey o Brila a 44,5 \u00baC \u00b1 0,5 \u00baC, y que produzcan indol en agua de peptona, pueden considerarse como positivos de coliformes fecales.<\/p>\n<p><a href=\"http:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/image006.jpg\" rel=\"attachment wp-att-57093\"><img loading=\"lazy\" decoding=\"async\" class=\"alignnone size-medium wp-image-57093\" src=\"http:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/image006-300x225.jpg\" alt=\"image006\" width=\"300\" height=\"225\" srcset=\"https:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/image006-300x225.jpg 300w, https:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/image006-400x300.jpg 400w, https:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/image006.jpg 640w\" sizes=\"auto, (max-width: 300px) 100vw, 300px\" \/><\/a><\/p>\n<ol start=\"3\">\n<li><u>Aislamiento e Identificaci\u00f3n de <em>Pseudomona aeruginosa<\/em><\/u><\/li>\n<\/ol>\n<p>La muestra de agua se siembra en caldo tripte\u00edna soya &#8211; tripticasa soya o caldo nutritivo. Se incuba a 37 \u00baC por 24 horas.<\/p>\n<p>Transcurridas las mismas se repica con ansa al medio de Levine. Las colonias asiladas se repican al medio agar Cetridime, en pico de flauta o en placa, incub\u00e1ndose 24 a 48 horas a 37\u00baC.<\/p>\n<p>Si el aislamiento se realiza a partir de tubos de Mc Conckey (utilizados en el aislamiento de coliformes) con desarrollo de velo en superficie, se repica tambi\u00e9n a agar Cetrimide. ya sea si se observa desarrollo y\/o pigmentaci\u00f3n se procede a efectuar las siguientes pruebas:<\/p>\n<ol>\n<li>Prueba de oxidasa<\/li>\n<li>Prueba de reducci\u00f3n de nitrato<\/li>\n<li>Prueba de licuefacci\u00f3n de la gelatina<\/li>\n<li>Prueba de gluconato<\/li>\n<li>Prueba de Citrato<\/li>\n<\/ol>\n<p><em>Pseudomona aeruginosa<\/em> es un bacilo Gram negativo, oxidasa positivo, m\u00f3vil, produce dos tipos de pigmentos (piocianina y fluoresce\u00edna), aunque existen clases no pigmentadas, reduce nitratos a nitrito y produce gas (esto \u00faltimo no siempre es positivo), lic\u00faa la gelatina en forma r\u00e1pida, reduce el gluconato.<\/p>\n<table width=\"579\">\n<tbody>\n<tr>\n<td width=\"134\"><\/td>\n<td width=\"77\">Gram<\/td>\n<td width=\"77\">Oxidasa<\/td>\n<td width=\"77\">Nitrato<\/td>\n<td width=\"77\">Gluconato<\/td>\n<td width=\"77\">Gelatina<\/td>\n<\/tr>\n<tr>\n<td width=\"134\"><em>Pseudomona aeruginosa<\/em><\/td>\n<td width=\"77\">&#8211;<\/td>\n<td width=\"77\">+<\/td>\n<td width=\"77\">+<\/td>\n<td width=\"77\">+<\/td>\n<td width=\"77\">+<\/td>\n<\/tr>\n<\/tbody>\n<\/table>\n<p><a href=\"http:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/image007.jpg\" rel=\"attachment wp-att-57094\"><img loading=\"lazy\" decoding=\"async\" class=\"alignnone size-medium wp-image-57094\" src=\"http:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/image007-300x225.jpg\" alt=\"image007\" width=\"300\" height=\"225\" srcset=\"https:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/image007-300x225.jpg 300w, https:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/image007-400x300.jpg 400w, https:\/\/www.elsindical.com.ar\/notas\/var\/www\/html\/notas\/wp-content\/uploads\/2016\/02\/image007.jpg 640w\" sizes=\"auto, (max-width: 300px) 100vw, 300px\" \/><\/a><\/p>\n<p>Ex\u00e1menes para determinar organismos pat\u00f3genos<br \/>\nSi bien la b\u00fasqueda directa de bacterias pat\u00f3genas espec\u00edficas no forma parte de los ex\u00e1menes bacteriol\u00f3gicos habituales a los que se someten las muestras de agua, habr\u00e1 casos en que ser\u00e1 necesario efectuar ex\u00e1menes para la determinaci\u00f3n de g\u00e9rmenes pat\u00f3genos intestinales; por ejemplo, durante una epidemia o cuando se est\u00e1 evaluando una nueva fuente. Las posibilidades de obtener buenos resultados ser\u00e1n entonces mayores si se analizan vol\u00famenes grandes de agua y si se usan medios selectivos para determinados g\u00e9rmenes pat\u00f3genos intestinales. Los an\u00e1lisis incluir\u00e1n algunas, sino todas, de las etapas siguientes: concentraci\u00f3n de los microorganismos en la muestra, inoculaci\u00f3n en un caldo de abono; subcultivos en medios de agar selectivos, y an\u00e1lisis bioqu\u00edmicos y serol\u00f3gicos de las colonias sospechosas. En vez de basarse en un m\u00e9todo \u00fanico, conviene utilizar el mayor n\u00famero posible de m\u00e9todos a fin de que no se pierda ninguna oportunidad de detectar a un germen pat\u00f3geno. Esto es especialmente v\u00e1lido para la detecci\u00f3n de <em>Salmonella<\/em>, puesto que no existe un solo m\u00e9todo que se adapte a todos los serotipos.<br \/>\nConcentraci\u00f3n de las muestras<br \/>\nLa t\u00e9cnica que se emplee depender\u00e1 en gran parte de la cantidad de part\u00edculas presentes en el agua. En las aguas de baja turbiedad, la muestra puede pasarse a trav\u00e9s de filtros de membrana. Debido a que la turbiedad aumenta en las aguas naturales, se puede recurrir a la filtraci\u00f3n a trav\u00e9s de tierras diatom\u00e1ceas o con filtros de cartucho o vela, con lo cual se incrementar\u00e1 la filtraci\u00f3n y podr\u00e1n tratarse vol\u00famenes de muestras m\u00e1s grandes. Como alternativa, se puede utilizar la t\u00e9cnica de la almohadilla de gasa, especialmente cuando el n\u00famero de g\u00e9rmenes pat\u00f3genos son pocos o su presencia no es permanente.<br \/>\n<em>Salmonella<\/em><br \/>\nEs probable que los concentrados de muestras necesiten ser enriquecidos previamente en agua de peptona amortiguada, para luego ser enriquecidos en caldo que contenga ya sea tetrationato, selenito, cloruro de magnesio o verde de malaquita. Estos, a su vez, pueden ser sometidos a subcultivo en medios como el verde brillante, sulfito de bismuto, agar de desoxicolata xilosa-lisina (DXL), citrato de desoxicolata o agar de MacConkey, examin\u00e1ndose luego las colonias sospechosas tanto bioqu\u00edmica como serol\u00f3gicamente. Entre las pruebas de depuraci\u00f3n bioqu\u00edmica se deber\u00e1 incluir: agar triple de az\u00facar y hierro, producci\u00f3n de indol, decarbosilasa y actividad de \u00df-galactosidasa. En las pruebas serol\u00f3gicas se incluir\u00e1 la aglutinaci\u00f3n con sueros polivalentes anti-o, anti-H y anti-Vi. Es imprescindible la eliminaci\u00f3n previa de cepas autoaglutinables. Cuando el an\u00e1lisis se realiza para detectar las <em>S. typhi<\/em> , el medio de cultivo aconsejado es la selenita F. El procedimiento de los tubos m\u00faltiples se utilizar\u00e1 para calcular el n\u00famero de <em>Salmonella <\/em>presentes en el agua.<br \/>\n<em>Shigella<\/em><br \/>\nDebido a que las bacterias coliformes y la mayor\u00eda de cepas de <em>Proteus vulgaris<\/em> son antag\u00f3nicas a la <em>Shigella<\/em>, es aconsejable elegir medios enriquecidos selectivos que reduzcan al m\u00ednimo las acumulaciones de compuestos vol\u00e1tiles y de los subproductos obtenidos a partir de estos microorganismos antag\u00f3nicos. Se puede usar caldo nutriente con un pH ajustado de 8,0 (es el nivel de pH que menos favorece el crecimiento de bacterias coliformes). Tambi\u00e9n es posible obtener un buen enriquecimiento de <em>Shigella<\/em> con un medio de cultivo autocitot\u00f3xico con base en caldo de tripticasa de soja conteniendo 1 mmol\/litro de 4-cloro- 2-ciclopentilfenil \u00df-D-galactopiranosida, 2,5 g\/litro de lactosa y sustancia amortiguadora de citrato a un pH de 6,2. La incubaci\u00f3n debe hacerse durante 6-18 horas, a una temperatura de 35\u00b0C. Estr\u00edense las culturas en agar DXL cuando hayan transcurrido 6 y 18 horas. Som\u00e9tanse las colonias sospechosas a pruebas de selecci\u00f3n bioqu\u00edmica y conf\u00edrmese las colonias sospechosas con antisueros de <em>Shigella<\/em> (sueros polivalentes y de tipo espec\u00edfico).<br \/>\nVibriones del c\u00f3lera y de otro tipo<br \/>\nComo forma de enriquecimiento primario se utiliza principalmente el agua alcalina de peptona y el agua de taurocolato telurita de peptona, los subcultivos se har\u00e1n utilizando como medios selectivos un agar de tiosulfato, citrato, bilis, sal y sucrosa o un agar de gelatina de taurocolato y telurito. Los cultivos que sean sospechosos se inocular\u00e1n en agar de hierro Kligler. Despu\u00e9s de 18 horas de incubaci\u00f3n, los <em>V. cholerae<\/em> producen un caracter\u00edstico color amarillo, sin ninguna producci\u00f3n de gas. Estos cultivos se depurar\u00e1n despu\u00e9s para determinar la actividad de ureasa y oxidasa; las cepas que demuestren ser negativas respecto a \u00farea y positivas en cuanto a oxidasa deber\u00e1n ser remitidas a un laboratorio de referencia para que se realicen otras pruebas bioqu\u00edmicas y de agrupamiento serol\u00f3gico.<br \/>\n<em>Coli<\/em> enteropat\u00f3genos<br \/>\nEn este caso se utilizan las t\u00e9cnicas para la detecci\u00f3n de bacterias coliformes fecales en el agua. Las colonias se confirmar\u00e1n como <em>E. coli<\/em> y si la evidencia epidemiol\u00f3gica as\u00ed lo garantiza, los subcultivos pueden ser remitidos a un laboratorio de referencia para agrupamiento serol\u00f3gico y, en caso necesario, para realizar las pruebas que determinan la enterotoxigenicidad.<br \/>\n<em>Yersinia enterocolitica <\/em> Se ha encontrado que el agar M-Endo es el medio de cultivo m\u00e1s conveniente y de m\u00faltiple utilidad debido a las distintas caracter\u00edsticas morfol\u00f3gicas de las colonias cuando se incuban tanto a 25 como a 35\u00b0C. Despu\u00e9s de transcurridas 72 horas de incubaci\u00f3n, las colonias aparecer\u00e1n bien definidas y con una coloraci\u00f3n roja oscura. Tambi\u00e9n da buenos resultados para el desarrollo bacteriano utilizar agar de MacConkey, siempre que la incubaci\u00f3n se haga a 25\u00b0C. Todos los grupos aislados que resulten sospechosos deber\u00e1n ser depurados bioqu\u00edmicamente a 25\u00b0C y 35\u00b0C utilizando ramnosa, rafinosa y melibiosa. Si existe evidencia epidemiol\u00f3gica que lo garantice, deber\u00e1n enviarse los subcultivos a un laboratorio de referencia para formar los grupos serol\u00f3gicos y efectuar las pruebas de susceptibilidad a los antibi\u00f3ticos.<br \/>\n<em>Campylobacter fetus<\/em><br \/>\nExiste una t\u00e9cnica de membrana filtrante que ha dado buenos resultados para aislar este germen pat\u00f3geno, y en la cual se emplea un agar sangu\u00edneo que contiene vancomic\u00edn, polimixin y trimetoprim. Los cultivos se incuban a 42-43\u00b0C, bajo tensi\u00f3n reducida de ox\u00edgeno, en una jarra anaer\u00f3bica durante 3 d\u00edas e inspeccionadas diariamente para detectar las colonias mucoideas grises no hemol\u00edticas (con di\u00e1metro de 1-2 mm). Las colonias sospechosas son te\u00f1idas con Gram para detectar las formas t\u00edpicamente curvas y en S, y sometidas a prueba para determinar la reacci\u00f3n positiva a la oxidasa y la catalasa, la motilidad y la incapacidad para desarrollarse aer\u00f3bicamente a una temperatura de 36\u00b0C. Los subcultivos deben ser remitidos a un laboratorio de referencia para mayores pruebas de tipo bioqu\u00edmico. No ser\u00eda pr\u00e1ctico que los elementos aislados de brotes espor\u00e1dicos fueran serotipificados, debido a la heterogeneidad de este organismo; por ahora, tampoco resulta pr\u00e1ctico el uso de un ant\u00edgeno com\u00fan o de un conjunto de serotipos diferenciales.<\/p>\n<p>Bibliograf\u00eda<\/p>\n<p>&nbsp;<\/p>\n<p><a href=\"http:\/\/www.vet.unicen.edu.ar\/prodyserv\/labaacui.htm\">http:\/\/www.vet.unicen.edu.ar\/prodyserv\/labaacui.htm<\/a><\/p>\n<p><a href=\"http:\/\/edicion-micro.usal.es\/web\/educativo\/m_especial\/29ctexto3.htm\">http:\/\/edicion-micro.usal.es\/web\/educativo\/m_especial\/29ctexto3.htm<\/a><\/p>\n","protected":false},"excerpt":{"rendered":"<p>Agua Potable: Significa que debe estar libre de microorganismos pat\u00f3genos, de minerales y sustancias org\u00e1nicas que puedan producir efectos fisiol\u00f3gicos adversos. Debe ser est\u00e9ticamente aceptable y, por lo tanto, debe estar exenta de turbidez, color, olor y sabor desagradable. 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